Zahngesundheit > Oral Probleme > Zahngesundheit > Verwendung von Alkoholessig in der Hemmung von Candida spp. und ihre Auswirkungen auf die physikalischen Eigenschaften von Acryl resins

Verwendung von Alkoholessig in der Hemmung von Candida spp. und ihre Auswirkungen auf die physikalischen Eigenschaften von Acryl resins

 

Zusammenfassung
hintergrund und die hohe Prävalenz von orale Candidiasis gegeben und die beschränkte Anzahl von Antimykotika zur Verfügung Infektion zu kontrollieren, diese Studie untersuchte die In-vitro-
antimykotische Aktivität von Alkohol Essig auf Candida
spp. und seine Wirkung auf die physikalischen Eigenschaften der Acrylharze.
Methods
Tests die minimale Hemmkonzentration (MIC) und minimale Fungizidkonzentration (MFC) von Essig Alkohol (0,04 g /ml Essigsäure) zu bestimmen und Nystatin ( Kontrolle) durchgeführt. Die antimykotische Aktivität von Alkohol Essig wurde durch mikrobielles Wachstum kinetischen Assays und Hemmung der Candida albicans
Haftung an Acrylharz zu verschiedenen Zeitintervallen bewertet. Die Oberflächenrauheit und die Farbe des Acrylharzes wurden eine Rauheitsmessgerätes und Farbanalysierer Gerät analysiert.
Ergebnisse | Alkohol Essig MIC zeigte 75% und MFC 62,5% von 2,5 mg /ml, mit fungiziden Effekt von 120 min, von Nystatin unterschiedlichen (p & lt; 0,0001), die pilzhemmende Wirkung zeigte. Alkohol Essig größere Hemmung von C. albicans
Haftung auf dem Acrylharz (p ≤ 0,001) verursacht im Vergleich zu Nystatin und nicht die Rauheit und Farbparameter des Materials ändern.
Fazit
Alkohol Essig zeigte antimykotische Eigenschaften gegen Candida
Stämme und verursacht keine körperlichen Veränderungen des Acrylharz.
Schlüsselwörter Candidiasis Orale Candida albicans
Essigsäure Zahnersatz hintergrund und die erhöhte Lebenserwartung und einen besseren Zugang der Bevölkerung gegeben zu Zahnpflege Dienstleistungen, gibt es eine höhere Prävalenz von Benutzern Zahnersatz aufgrund erheblicher Zahnverlust bei älteren Menschen, entweder in Industrie- oder Entwicklungsländern [1,2].
Zusammenhang mit der Verwendung von Zahnprothesen, das Auftreten von Infektionen tragen verursacht von Pilzarten, insbesondere Candida
, ist weit verbreitet und vor allem bei Patienten mit schlechtem Allgemeinzustand und Immunsuppression [3] berichtet. Diese Infektionen werden Prothesenstomatitis genannt und kann klinisch, basierend auf den unterschiedlichen Grad der Rötung, die auf der Schleimhaut festgestellt werden, um die Basis der partiellen oder vollständigen prothetischen Vorrichtungen zugrunde liegen. Zu den häufigsten ätiologischen Faktoren sind: schlechte Mundhygiene; schlecht ausgerüstet Zahnersatz; Immunsystem geschwächt; willkürlichen Einsatz von Antibiotika; und Proliferation von Candida
spp. [4]. Einer der wichtigsten Faktoren
zur Besiedlung von Candida spp
beitragen. liegt in ihrer Anpassungsfähigkeit an eine Vielzahl von Wachstums "Lebensräume" durch Bildung von Mikrobengemeinschaften an eine extrazelluläre Matrix gebunden Polysacchariden, einschließlich Speichelproteinen. Candida
kann schnell die Basis des Acrylharzes kolonisieren, eine höhere Stabilität für die Pilzinfektion in dem Wirt Bereitstellen [5].
Als Pilzinfektionen der Mundhöhle, verursacht durch Candida
spp. sind oberflächlich, die topische Anwendung von Nystatin und Miconazol empfohlen worden. In Fällen keine positive Antwort auf diese therapeutischen Mittel, andere Substanzen, wie Fluconazol und Ketoconazol kann zur systemischen Anwendung [6,7] vorgeschrieben werden. Allerdings ist die unterschiedslose Verwendung von herkömmlichen Antimykotika Ergebnisse bei der Selektion von resistenten Stämmen, insbesondere bei immunsupprimierten Patienten und bei Patienten mit schweren systemischen Erkrankungen [8]. Diese Tatsache rechtfertigt die Entwicklung neuer Therapien für den Einsatz in der täglichen klinischen Praxis [9]. Es sollte auch, dass viele Candida spp
erwähnt werden. die Notwendigkeit für ein Produkt können das Acrylharz verwendet bei der Herstellung von prothetischen Vorrichtungen in einer Tiefe im Bereich von 1 bis 2 um [10], so zu durchdringen, Hervorhebung, die den Biofilm ermöglicht entfernen, ohne die mechanischen Eigenschaften des Harzes zu beeinträchtigen. Es ist erwähnenswert, daß unter den geforderten Eigenschaften der Materialien der Feststellung, bei der Herstellung von Prothesen verwendet, die im Zusammenhang mit Rauhigkeit, Oberflächenspannung, elektrostatische Wechselwirkungen und Härte sind von klinischer Bedeutung, da sie Biofilmbildung und Farbveränderung auswirken können. Oberflächenrauhigkeit verursacht Adhäsion und Bindung von C. albicans
, die für das Auftreten von Stomatitis von besonderer Bedeutung ist [11]. In diesem Hintergrund
, wird angenommen, dass der Alkoholessig steuern und Prothesenstomatitis verhindern aufgrund ihrer Desinfektionsmittelwirkung auf das Acrylharz bei der Herstellung von Zahnersatz eingesetzt. Eine niedrige Wasserstoffpotential für die Diffusion von Essigsäure und deren mögliche Wechselwirkung mit Enzymen in der Bildung von Ergosterol, ein Hauptbestandteil von Pilzplasmamembranen beteiligt führt, kann die bekannte antimikrobielle Wirkung von Alkoholessig, insbesondere anti-Candida
Eigenschaften erklären. Darüber hinaus hat es niedrige Kosten und einfachen Zugang [12,13]. Ziel dieser Studie war die in vitro
antimykotische Wirkungen auf den Alkoholessig auf Candida spp
auszuwerten., Und seine Wirkung auf die physikalischen Eigenschaften des Acrylharzes, um zu überprüfen, wie Rauhigkeit und Farbänderung an der Oberfläche.
Methods
Alkohol Essig Marke Minhoto® Batch L281D (Ind. Reunidas Raymundo da Fonte SA, Paulista, PE, Brasilien) wurde als Testprodukt, das 4% Essigsäure (0,04 g /ml) in seiner Zusammensetzung verwendet. Das Produkt wurde für die minimale Hemmkonzentration (MIC), Mindestfungizidkonzentration (MFC), mikrobielle Wachstumskinetik Hemmung der Candida spp
getestet. Haftung auf der Oberfläche von Acrylharz und Wirkungen auf Oberflächenrauheit und Farbparameter. Nystatin (Sigma - Aldrich Brasil, São Paulo, SP, Brasilien) wurde als positive Kontrolle verwendet. Während der Tests, Kontrollen für Hefelebensfähigkeit wurden ebenfalls durchgeführt
Die folgenden Stämme wurden verwendet:. Candida albicans
ATCC 76485,
Candida albicans 21 LM, Candida albicans
MI03, Candida albicans
LM 615, Candida albicans
13 LM, Candida tropicalis
, ATCC 13803, Candida tropicalis
LM 33 und Candida tropicalis
LM 70 Kolonien in 5 ml steriler Kochsalzlösung suspendiert wurden, 0,145 mol /L ( 0,85% NaCl). Die resultierende Suspension wurde in einem Vortex-Mischer (Phoenix ®) für 15 Sekunden eingebracht und die Zelldichte wurde bei einer Wellenlänge von 530 nm unter Verwendung eines Spektrophotometers auf 0,5 McFarland-Skala eingestellt.
Antimikrobielle Aktivität (MIC und MFC)
MIC 96-well Mikrotiterplatten [14] wurde unter Verwendung der Mikroverdünnungstechnik bestimmt. Insgesamt 100 ul 2-fach konzentriert Sabouraud-Glucose-Bouillon (SDB) (Difco Laboratories, Detroit, Mich., USA) wurde in jeder Vertiefung, gefolgt von 100 & mgr; l Testsubstanz (Alkohol Essig oder Nystatin bei Anfangskonzentrationen von 40.000 verteilt & mgr; g /ml und 100 ug /ml, jeweils). Ein Aliquot von 100 & mgr; l wurde aus der ersten Wanne gesammelt und dann in die folgenden ein, um mit einem 2-fachen seriellen Verdünnung ablaufen verzichtet. Etwa 10 & mgr; l des Inokulums wurden in jede Vertiefung gegeben. Tests wurden dreifach durchgeführt, und die Platten 48 Stunden bei 35 ° C inkubiert wurden. MIC wurde als die niedrigste Konzentration der Lage, als sichtbares Wachstum der Stämme zu inhibieren. Um die Anwesenheit von lebensfähigen oder nicht lebensfähigen Mikroorganismen zu bestätigen, wurden 10 ul TTC Farbstoff (2,3,5 Triphenyltetrazoliumchlorid) verwendet wurde, die die Aktivität der Dehydrogenase-Enzyme in der Zellatmung, Anfärben lebenden Proben in red [beteiligt spiegelt ,,,0],15]. Nach 24 Stunden Inkubation wurde eine visuelle Lesung durchgeführt. Die MFC
nach dem Lesen von MIC wurde bestimmt durch das Sammeln von Aliquots von 10 & mgr; l aus den Subkulturen entsprechend MIC, MICx2 und MICx4 und Mischen von ihnen zu 100 ul SDB in 96-Well Mikrotiterplatten. Nach Inkubation für 24 h bei 35 ° C wurde visuelle Ablesung durchgeführt wird, am Boden der Vertiefungen, die Bildung von Zellclustern Berücksichtigung [14]. Zur besseren Übersichtlichkeit der Ergebnisse wurden 10 ul TTC zugegeben und MFC wurde als die niedrigste Konzentration des Testprodukts der Lage zu hemmen Wachstum der Stämme [14] charakterisiert.
Microbial Wachstumskinetik
C. albicans
LM 615 wurde für die Präsentation der besten mikrobielles Wachstum ausgewählt, während MIC und MFC zu erhalten. Für den Assay wurden 0,5 ml der Hefesuspension zu 4,5 ml SDB mit der Testsubstanz (Alkoholessig oder Nystatin) inokuliert in Konzentrationen eingestellt MIC, MICx2 und MICx4. In Zeitintervallen auf 0 (t0) entspricht, 30 (t1), 60 (t2), 120 (t3) und 180 Minuten (t4), 10 & mgr; l-Aliquots wurden aus der Suspension gewonnen und gezüchtet auf Sabouraud-Dextrose-Agar (SDA) (Difco Laboratories, Detroit, Mich., USA) Platten. Nach Inkubation bei 35 ° C für 24 h wurde die Anzahl der koloniebildenden Einheiten (CFU) gezählt. Die Ergebnisse sind als mikrobielle Tod Kurven dargestellt. Herstellung
Acrylharz Proben Um
der Hemmung des Pilz Haftung an dem Acrylharz zu überprüfen, sowie die Veränderungen der Oberflächenrauhigkeit und der Farbe, 78 kreisförmige Proben wurden aus auto-polymerisierte Acrylharz (Vip-Flash ®, Vipi Dental Products, Pirassununga, São Paulo, Brasilien), Sizing 12 mm im Durchmesser und 7 mm in der Dicke. Die Proben wurden bis zur Weiterverarbeitung mit Wolfram Schleifer (1508 Edenta AG, Haupistrasse, Schweiz) unterzogen und mit Carborundum Schleifpapier verschiedener Körnungen (220, 330, 600 und 1200) Polieren und Scheiben Filz in Bimsstein Paste /destilliertem Wasser eingebettet, gefolgt durch Spülen und Sterilisieren.
Hemmung des Pilz Haftung auf dem Acrylharzoberfläche
Achtzehn Proben wurden in Teströhrchen, die 2,5 ml SDB gegeben und 0,5 ml der Hefesuspension (C. albicans
LM 615) bei 35 ° C für 48 h. Die Proben wurden zufällig in drei Gruppen eingeteilt: GI (n = 6) - Negative Kontrolle (keine antifungale Substanz gewährleisten C. albicans
Haftung an Acrylharz), GII (n = 6) - Alkoholessig und GIII (n = 6) -. Nystatin
Ausreichende Mengen an Alkohol Essig oder Nystatin-Lösung wurden in den Röhrchen, die SDB /Hefesuspension in GII und GIII Gruppen, was zu Endkonzentrationen entsprechend MIC, MICx2 und MICx4 hinzugefügt. Nach der Inkubationszeit wurden die Proben in Röhrchen, die 5 ml Kochsalzlösung (0,85% NaCl), und gerührt für 60 s gespült und platziert. Dann wurden 10 ul dieser Lösung wurden auf SDA-Platten gezüchtet, die für 48 h zur weiteren Lektüre und Bakterienzählung, in dreifacher Ausführung bei 35 ° C inkubiert wurden.
Test von Veränderungen der Oberflächenrauheit und Farbparameter des Acrylharzes
In den auf die Wirkung von Alkohol Essig exponierten Gruppen, entsprechende Konzentrationen an MIC (n = 6), MIC × 2 (n = 6) und MIC × 4 (n = 6) wurden verwendet. Sechs Proben wurden Nystatin und andere sechs bis kein Pilzbekämpfungsmittel ausgesetzt. Proben wurden auf den mittleren Bereich markiert, 1 mm nach rechts und 1 mm nach links und auf eine Rauhigkeit Zählereinrichtung (SJ -201 Mitutayo - Japan, Rauheitsparameter Ra: 0,8 Cut-off
mm) vorgelegt auszuführen die anfängliche Messung (t = 0) an den drei Punkten. Oberflächenrauhigkeit (Ra) wurde als Mittelwert f-Werte der drei Punkte festgelegt. Proben wurden in die Lösung eingetaucht für 30, 60, 120 und 180 Minuten, mit destilliertem Wasser gewaschen, auf einem saugfähigen Papiertuch getrocknet und zur rugosimetric Analyse unterzogen.
Mit dem Zweck des Messens der Farbänderungen in dem Acrylharz, 30 Proben waren zufalls~~POS=TRUNC in drei Gruppen aufgeteilt, wie zuvor erwähnt. In den Gruppen zu Alkoholessig und Nystatin entsprechen, wurden die gleichen Konzentrationen wie zuvor verwendet. Proben wurden zu den gleichen Zeitintervallen ausgesetzt (0, 30, 60, 120 und 180 Minuten). Die Farbanalyse wurde mittels eines Farbanalysegerät (Modell ACR-1023 bestimmt, Instrutherm Instrumentos de Medição Ltda, São Paulo, Brasilien, Liquid Crystal Display von 59 mm × 34 mm; Messgeometrie: 45 ° /0 °; Spektralbereich von 400 bis 700 nm, Farbsensor von drei foto~~POS=TRUNC Sender von roten, grünen und blauen Farbe), die RGB-System. die statistische Analyse
Daten in einer Datenbank auf GraphPad Prism 2004. die antimykotische Aktivität bewertet wurde aufgezeichnet wurden durch zwei~~POS=TRUNC-Analyse der Varianz (ANOVA), gefolgt vom Tukey post-Test, mit Signifikanzniveau von 5%. Um die Änderungen, die durch Alkoholessig auf die Oberflächenrauhigkeit und die Farbe des Acrylharz, Kruskal-Wallis und Dunn Post-Test ausgewertet wurden verwendet.
Ergebnisse | Die MIC und MFC Ergebnisse von Essig Alkohol, die 0,04 g /ml Essigsäure und Nystatin (positive Kontrolle) sind in Tabelle 1 Alle getesteten Stämme gezeigt, wurden mit MIC der Einwirkung von Alkohol Essig, empfindlich zu sein gefunden 75% gleich bis 2500 & mgr; g /ml. C. tropicalis
ATCC 13803 und C. tropicalis
33 LM waren noch empfindlicher auf Alkohol Essig, zeigt MIC von 1250 & mgr; g ml. Jedoch benötigt diese Stämme (25%) höhere Konzentrationen des Testprodukts fungizide Wirksamkeit zu schaffen, mit MFC-Wert von 10 mg /ml. Die anderen Stämme (62,5%) zeigten MFC Werte gleich bis 2500 & mgr; g /ml, die gleich der MIC. Bezüglich Nystatin wurden alle Stämme bei einer Konzentration von 3,12 & mgr; g /ml inhibiert wird, die als Kontrolle in dem anderen tests.Table 1 MIC und MFC Ergebnisse Alkoholessig und Nystatin auf Candida Spezies
Alcohol Essig verwendet wurde
Nystatin
Dehnungen
MIC (ug /ml)
MFC (ug /ml)
MIC (ug /ml)
MFC (pg /mL)
C. albicans
LM 21
2500
2500

3,12
6,25
C. albicans
MI03
2500
2500
3,12

12,5
C. albicans
LM 615
2500
5000
3,12
12,5

C. albicans
LM 13
2500
2500
3,12
3.12

C. albicans
ATCC 76485
2500
2500
3,12
6,25
C. tropicalis
ATCC 13803
1500
10000
3,12
12,5
C. tropicalis
LM 33
1500
10000
3,12
3.12
C. tropicalis
LM 708

2500
2500
3,12
3.12
1 Abbildung der mikrobiellen Tod Kurven in Gegenwart von Alkohol Essig in Konzentrationen zeigt entsprechend MIC, MIC × 2 und MIC × 4 als Funktion der Zeit. Es wurde beobachtet, dass für die ersten Konzentrationen erwähnt, fungistatische Aktivität 0-180 Minuten. Jedoch für MIC × 4, fungistatische Aktivität des Testprodukt wurde von 0 bis 120 Minuten, gefolgt von fungiziden Wirkungen nachgewiesen. Die positive Kontrolle (Nystatin) an MIC, MIC × 2 und MIC × 4 gezeigt, fungistatische Wirkung auf allen Zeitintervallen. . 1 Microbial Tod Kurve gegen die Zeit für Alkoholessig bei MIC, MIC × 2 und MIC × 4 Konzentrationen
Statistisch signifikanter Unterschied zwischen der Wirkung von Alkoholessig und Nystatin (p & lt; 0,05) beobachtet, und auch in Bezug auf die negative Kontrolle, die durch das Fehlen von antimykotischen Mittels dargestellt. Diese Schlußfolgerung kann in 2, insbesondere in den Zeiten 120 bis 180 Minuten deutlich der Beginn der fungiziden Wirkung von Alkoholessig überprüft werden. 0,0001, Türkei; ANOVA, p & lt - 2 Mikrobielle Tod gegen
Zeitkurve, die die Beziehung zwischen Alkohol Essig (Essigsäure) und Nystatin, bei MIC × 4 und Kontrolle (ohne antimykotische Substanz) (2 verwendet , p & lt;. 0.05)
3 zeigt Daten über die Wirksamkeit von Alkoholessig in der Hemmung der Adhäsion von C. albicans Abbildung
LM 615 zu Acrylharzproben, die Wirkung von Essigsäure und Nystatin Nachweis (p & lt; 0,05). Der erstere konnte mikrobiellen Adhäsion an MIC und MIC × 2 zu reduzieren, und es vollständig an MIC × 4. 3 Adhäsionstest und CFU Zählen nach der Einwirkung von Alkohol Essig, Nystatin und Kontrolle (keine antifungale Substanz) verhindern.
die Oberflächenrauhigkeit (Ra) Analyse zeigte keine signifikante Veränderung (mehr als 0,2 & mgr; m) zu Alkohol Essig (Tabelle 2) .Tabelle 2 Oberflächenrauigkeit (Ra) in & mgr; m von Proben der Einwirkung von Alkohol Essig über die Zeit abgegeben exponierten Proben
Zeit (min)
Alkohol Essig
Nystatin
Steuerung
MIC
MIC × 2
MIC × 4


0

0.16

0.14

0.11

0.11

0.09


30

0.17

0.13

0.12

0.77

0.11


60

0.16

0.15

0.12

1.1

0.11


120

0.15

0.14

0.16

1.2

0.09


180

0.16

0.13

0.16

1.2

0.1


Kein signifikanter Unterschied zwischen den Gruppen beobachtet wurde (p & gt; 0,05 - Kruskal Wallis Test). Im Hinblick auf mögliche Änderungen in der Farbe
zeigten die Ergebnisse, dass Alkoholessig nicht die Farbe der belichteten Proben in Zeitintervallen von 0 bis 180 beeinflußte Minuten bei verschiedenen Konzentrationen, wie in Tabelle 3.Table 3 Farbe der Proben nach der Exposition gegenüber der Einwirkung von Alkohol Essig
Belichtungszeit (min)
Nystatin (Werte in der RGB-Skala ausgedrückt) zu sehen
0
60
120
180
Alkohol Essig MIC

2 2 4 1 6 9 (a) 1 4 4
(a)
(a)
(a)
Alkohol Essig MIC x 2

(a)
(a)
(a)
(a)

Alkohol Essig MIC x4

(a)

(a)

(a)

(a)


Nystatin

(a)

(a)

(a)

(a)


Control

(a)

(a)

(a)

(a)


(A) Stellt identische Werte.
Diskussion
Die Ergebnisse unserer Studie zeigen, dass Alkohol Essig pilzhemmende und fungizide Wirkung auf die getesteten Stämme von Candida
hat. Frühere Studien nachgewiesen haben bereits die antimykotische Aktivität von Essige [16], obwohl MIC und MFC-Werte werden nicht nach dem Mikrodilutionstest Technik zum Ausdruck, die eine kostengünstige und schnelle Methode, die reproduzierbare Ergebnisse liefert und erfordert geringe Mengen an Keimsuspension und Kultur media [14,17,18]. der Wirkungsmechanismus von Essigsäure
, ist die Hauptkomponente der Alkoholessig, wahrscheinlich zu einer verminderten Wasserstoffpotential bezogen, wodurch die Diffusion der Säure über die Plasmamembran von Pilzzellen zu erleichtern [ ,,,0],18]. Die Literatur hat auch hemmende Wirkung von Essigsäure auf 14α-Lanosterol-Demethylase berichtet, ein wichtiges Enzym bei der Bildung von Ergosterol beteiligt sind, die für die Aufrechterhaltung der Integrität der Pilzplasmamembran essentiell ist [19,20].
Bezug Nystatin die MIC und MFC-Werte für alle getesteten Stämmen erhalten wurden gemäß der Literatur [21]. Nystatin wurde als Kontrolle gewählt, weil es ein Standard antimykotische ist weit verbreitet für die topische Behandlung von Pilzinfektionen in der Mundhöhle verwendet [22]. Sein Wirkungsmechanismus ist mit der Hemmung von Enzymen in der Bildung von Ergosterol und damit Durchlässigkeit der Zellmembran [23].
Microbial Wachstumskinetik ist eine wichtige Variable zu bewerten, die fungistatische oder fungizide Wirksamkeit einer bestimmten Substanz beteiligt bezogenen sowie den Einfluss der Belichtungszeit auf der Zelltod Verfahren [24] zu bestimmen. Die mikrobiellen Kinetik der Alkoholessig zeigte fungistatische Aktivität bei MIC und MICx2 für das Zeitintervall zwischen 0 und 120 Minuten, und von dieser Zeit gab es fungizide Aktivität bei MICx4 (10 mg ml). Fungizide Wirkung als solche betrachtet, wenn das Produkt in der Lage, drei logarithmischen Einheiten zu reduzieren, 10 zu stützen, und diese Veränderungen mit dem pilzhemmende Verhalten konsistent sind.
Als dynamischer Prozess anerkannt verwendet, um neue antimikrobielle Wirkstoffe zu bewerten, die mikrobielle Tod im Vergleich zu
Zeit-Kurve wurde in früheren Studien mit Alkohol Essig erwähnt [25], behindern die Standardisierung der Ergebnisse und den Vergleich zwischen ihnen nicht. Diese Studien haben gezeigt, dass Einwirkzeiten erscheinen nach dem Zufallsprinzip angenommen wurden, im Bereich von 10 Minuten bis zu acht Stunden ohne methodische Referenz basierend auf mikrobielle Kinetik [17,26].
Als Standard antimykotische Verwendet wurde Nystatin auch getestet die mikrobielle Tod im Vergleich zu
Zeit-Kurve. Frühere Studien haben fungistatischen Aktivität von Nystatin [23,27], erhärten die Ergebnisse der vorliegenden Studie gezeigt, obwohl fungizide Aktivität bei höheren Konzentrationen sichtbar.
Bei der Auswahl eines Desinfektionsmittels, sollte man die Kompatibilität mit oral bewerten Gewebe, sowie mit den Materialien, die die Basis von Zahnersatz [28] zusammensetzen. Die Anhaftung von Candida
spp. an die Oberfläche von Acrylharz ist üblicherweise der erste Schritt in der Besiedlung von Geweben, die in Kontakt mit der entfernbaren Prothese kommen, und neigt dazu, einen Biofilm oft resistent gegen herkömmliche antimykotische Therapie [29] zu bilden. C. albicans
Arten werden als diejenigen mit größerer Fähigkeit beschrieben Mundschleimhaut Zellen und an der Oberfläche des Acrylharzes [30], zu haften, weshalb C. albicans
die ausgewählte Spezies wurde MIC und MFC zu bestimmen . Frühere Studien haben gezeigt, daß eine unverdünnte Alkoholessig Lösung in der Lage war, die Adhäsion von Mikroorganismen zu hemmen, einschließlich C. albicans,
auf Acrylharz [31], die ebenfalls in dieser Studie beobachtet wurde. Allerdings haben andere Untersuchungen, dass Alkoholessig gezeigt nicht in der Lage war, die Adhäsion von C. albicans
Zellen Acrylharz [32] zu hemmen. Keine signifikanten Veränderungen
wurden in der mittleren Oberflächenrauhigkeit des Materials beobachtet, was bestätigt vorherige Ergebnisse [31,33]. Änderungen an Oberflächenrauhigkeit identifiziert nach Exposition mit verschiedenen Alkohol Essig Konzentrationen überschreiten nicht den Schwellenwert von 0,2 & mgr; m, über dem Einfluss der Oberflächenrauhigkeit auf die Adhäsion von Mikroorganismen zu erwarten ist, da Oberflächenunregelmäßigkeiten als mikrobiologische Nische dienen, den Schutz Infektionserregern aus die mechanische Wirkung des Zähneputzens [34]. diese Studie zeigte nach einer Zeitspanne von 180 Minuten der Exposition gegenüber Alkoholessig und Nystatin keine Farbänderungen in dem Acrylharz
, frühere Ergebnisse bestätigt wird [35]. Die ursprüngliche Farbe eines Harzes kann durch die Einnahme von großen Mengen an Farbstoffen, Flüssigkeitsaufnahme und Eintauchen in Desinfektionslösungen, die die Oberflächenrauhigkeit beeinflussen verändert werden, um die Ästhetik des Materials zu beschädigen [36]. Eine Studie unter Verwendung Essige zeigte Farbänderung in Acrylharz nach einem Intervall von 12 bis 30 Tagen nach dem Eintauchen [31]. Auch die Bedeutung der unter Berücksichtigung der Wirkung einer längeren Einwirkung von Acrylharz auf die Wirkung von Desinfektionsmitteln zu wissen, kürzere Zeiten, wie sie in der vorliegenden Studie verwendet werden, müssen verwendet werden, da sie die Zeit, um die prothetische Vorrichtungen außerhalb der Mundhöhle zu simulieren. Frühere Studien haben die Wirkung von Desinfektionsmittellösungen auf die physikalischen Eigenschaften des Acrylharzes bewertet. Ethanol, in unterschiedlichen Konzentrationen können Auswirkungen auf die Rauheit und Farbe erzeugen [33]. Die Oberflächenrauhigkeit des Acrylharzes höher war mit der Verwendung von 3,8% Natriumperborat und untere mit 2% Chlorhexidingluconat [31]., Die Ergebnisse dieses Tests zeigten, wissenschaftliche Erkenntnisse über die signifikante antimykotische Wirkung von Alkoholessig gegen Candida
species sowie Fehlen von negativen Einfluss auf das Acrylharz. Diese Ergebnisse unterstützen die Möglichkeit, das Produkt, das durch weitere Laboruntersuchungen Untersuchung ihrer Wirkungen auf die Multispezies Biofilmbildung, Mikrohärte von Acrylharz gehen sollte; klinische Studien sollten auch die Sicherheit, Verträglichkeit und klinische Wirksamkeit dieser Substanz.
Fazit
Alkohol Essig in vitro
Aktivität gegen Candida
nach Stämmen mit Prothesenstomatitis, mit Fungizid Aktion beteiligt zeigte, um zu bestimmen berücksichtigt werden 120 Minuten der Exposition gegenüber einer Konzentration von 10 mg /ml. Es war auch in der Lage, die Haftung von C. albicans
zu Acrylharz zu verhindern und nicht die Ursache für Veränderungen auf die Oberflächenrauhigkeit und die Farbe des Acrylharz nach zwei Stunden der Exposition.
Erklärungen
Danksagung
Wir danken dem Graduiertenkolleg in der Zahnmedizin, Bundesuniversität von Paraíba, für die finanzielle Unterstützung für diese Forschung. konkurrierende Interessen
die Autoren erklären, dass sie keine Interessenkonflikte haben.
Beiträge der Autoren
RDC konzipiertes der Studie, und in seiner Gestaltung und Koordination beteiligt und half, das Manuskript zu entwerfen. ACLGM durch der mikrobiologischen Assays und den Test der Oberflächenveränderung in dem Acrylharz. EOL beteiligte sich an der Gestaltung der Studie und die Koordination und half der mikrobiologischen Assay durchgeführt. AUDB nahmen an dem Design der Studie durchgeführt und die statistische Analyse. JAO beteiligte sich an der Vorbereitung von Proben in Acrylharz und half, das Manuskript zu entwerfen. ALC erfolgt in den Acrylharzproben den Test der Farbwechsel aus. Alle Autoren gelesen und genehmigt haben das endgültige Manuskript.